2,43
1,65
1,98
0,73
1,88
1,81
2,43
2.2 Стандардни супстанции што се користат во калибрациската крива на релативната распределба на молекуларната маса: инсулин, микопептиди, глицин-глицин-тирозин-аргинин, глицин-глицин-глицин
3 Инструменти и опрема
23.2
21.4
22.2
16.1
22.3
20,8
23,9
27,5
Генерално, процентот на аминокиселини во производите на Сустар е поголем отколку во производите на Зинпро.
Дел 8 Ефекти од употребата
Ефекти на различни извори на минерали во трагови врз производствените перформанси и квалитетот на јајцата кај кокошките несилки во доцниот период на несилка
Процес на производство
Технологија на таргетирана хелација
Технологија на емулгирање со смолкнување
Технологија на прскање и сушење под притисок
Технологија за ладење и одвлажнување
Напредна технологија за контрола на животната средина
Додаток А: Методи за одредување на релативната молекуларна маса на пептидите
Усвојување на стандардот: GB/T 22492-2008
1 Принцип на тестирање:
Беше определено со високо-ефикасна гел филтрациска хроматографија. Тоа значи, користејќи порозен филер како стационарна фаза, врз основа на разликата во релативната молекуларна маса на компонентите на примерокот за одвојување, детектирана на пептидната врска на ултравиолетовата апсорпциска бранова должина од 220 nm, користејќи го наменскиот софтвер за обработка на податоци за одредување на релативната молекуларна маса со гел филтрациска хроматографија (т.е. GPC софтверот), хроматограмите и нивните податоци беа обработени, пресметани за да се добие големината на релативната молекуларна маса на соиниот пептид и опсегот на дистрибуција.
2. Реагенси
Експерименталната вода треба да ги исполнува спецификациите за секундарна вода во GB/T6682, употребата на реагенси, освен за посебни одредби, е аналитички чиста.
2.1 Реагенсите вклучуваат ацетонитрил (хроматографски чист), трифлуорооцетна киселина (хроматографски чиста),
2.2 Стандардни супстанции што се користат во калибрациската крива на релативната распределба на молекуларната маса: инсулин, микопептиди, глицин-глицин-тирозин-аргинин, глицин-глицин-глицин
3 Инструменти и опрема
3.1 Високоперформансен течен хроматограф (HPLC): хроматографска работна станица или интегратор со UV детектор и GPC софтвер за обработка на податоци.
3.2 Единица за вакуумска филтрација и дегасификација во мобилна фаза.
3.3 Електронска вага: градуирана вредност 0,000 1g.
4 чекори на работа
4.1 Хроматографски услови и експерименти за адаптација на системот (референтни услови)
- 4.1.1 Хроматографска колона: TSKgelG2000swxl300 mm×7,8 mm (внатрешен дијаметар) или други гел колони од ист тип со слични перформанси погодни за одредување на протеини и пептиди.
- 4.1.2 Мобилна фаза: Ацетонитрил + вода + трифлуорооцетна киселина = 20 + 80 + 0,1.
- 4.1.3 Бранова должина на детекција: 220 nm.
- 4.1.4 Брзина на проток: 0,5 mL/мин.
- 4.1.5 Време на детекција: 30 мин.
- 4.1.6 Волумен на инјектирање на примерокот: 20μL.
- 4.1.7 Температура на колоната: собна температура.
- 4.1.8 За да се задоволи хроматографскиот систем со барањата за детекција, беше предвидено дека под горенаведените хроматографски услови, ефикасноста на колоната со гел хроматографска колона, т.е. теоретскиот број на плочи (N), не е помала од 10000, пресметана врз основа на врвовите на трипептидниот стандард (Глицин-Глицин-Глицин).
- 4.2 Создавање на стандардни криви на релативна молекуларна маса
- Горенаведените стандардни раствори на пептиди со различна релативна молекуларна маса со масена концентрација од 1 mg/mL беа подготвени со споредување на мобилната фаза, измешани во одреден сооднос, а потоа филтрирани низ мембрана на органска фаза со големина на порите од 0,2 μm~0,5 μm и инјектирани во примерокот, а потоа добиени се хроматограмите на стандардите. Кривите за калибрација на релативната молекуларна маса и нивните равенки беа добиени со прикажување на логаритмот на релативната молекуларна маса во однос на времето на задржување или со линеарна регресија.
4.3 Третман на примероци
Точно измерете 10 mg од примерокот во волуметриска колба од 10 mL, додадете малку мобилна фаза, ултразвучно протресете 10 минути, така што примерокот целосно ќе се раствори и измеша, разредете со мобилна фаза до скалата, а потоа филтрирајте низ мембрана на органска фаза со големина на порите од 0,2 μm~0,5 μm, а филтратот е анализиран според хроматографските услови во A.4.1.
- 5. Пресметка на релативната распределба на молекуларната маса
- По анализата на растворот од примерокот подготвен во 4.3 под хроматографските услови од 4.1, релативната молекуларна маса на примерокот и неговиот опсег на распределба може да се добијат со замена на хроматографските податоци од примерокот во калибрациската крива 4.2 со GPC софтвер за обработка на податоци. Распределбата на релативните молекуларни маси на различните пептиди може да се пресмета со методот на нормализација на површината на пикот, според формулата: X=A/A вкупно × 100
- Во формулата: X - Масениот удел на релативната молекуларна маса на пептид во вкупниот пептид во примерокот, %;
- A - Врвна површина на пептид со релативна молекуларна маса;
- Вкупно А - збирот од површините на врвовите на секој пептид со релативна молекуларна маса, пресметан на едно децимално место.
- 6 Повторливост
- Апсолутната разлика помеѓу две независни определувања добиени под услови на повторување не треба да надминува 15% од аритметичката средна вредност на двете определувања.
- Додаток Б: Методи за одредување на слободни аминокиселини
- Усвојување на стандардот: Q/320205 KAVN05-2016
- 1.2 Реагенси и материјали
- Глацијална оцетна киселина: аналитички чиста
- Перхлорна киселина: 0,0500 mol/L
- Индикатор: 0,1% кристално виолетов индикатор (глацијална оцетна киселина)
- 2. Одредување на слободни аминокиселини
Примероците беа сушени на 80°C во текот на 1 час.
Ставете го примерокот во сув сад за да се олади природно на собна температура или да се олади до употреблива температура.Измерете приближно 0,1 g од примерокот (со точност до 0,001 g) во сува конусна колба од 250 mL.Брзо продолжете со следниот чекор за да избегнете примерокот да апсорбира амбиентална влага.Додадете 25 мл глацијална оцетна киселина и добро измешајте не повеќе од 5 минути.Додадете 2 капки кристално виолетов индикаторТитрирајте со 0,0500 mol/L (±0,001) стандарден раствор за титрација на перхлорна киселина сè додека растворот не ја промени бојата од виолетова до крајната точка.
Запишете го волуменот на потрошениот стандарден раствор.
- Извршете го слепиот тест во исто време.
- 3. Пресметка и резултати
- Содржината на слободни аминокиселини X во реагенсот се изразува како масен удел (%) и се пресметува според формулата: X = C × (V1-V0) × 0,1445/M × 100%, во формулата:
- C - Концентрација на стандарден раствор на перхлорна киселина во молови на литар (mol/L)
- V1 - Волумен што се користи за титрација на примероци со стандарден раствор на перхлорна киселина, во милилитри (mL).
- Vo - Волумен што се користи за титрациска слепа со стандарден раствор на перхлорна киселина, во милилитри (mL);
M - Маса на примерокот, во грамови (g).
| 0,1445: Просечна маса на аминокиселини еквивалентна на 1,00 mL стандарден раствор на перхлорна киселина [c (HClO4) = 1,000 mol/L]. | 4.2.3 Стандарден раствор за титрација на цериум сулфат: концентрација c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, подготвено според GB/T601. | |
| Усвојување на стандарди: Q/70920556 71-2024 | 1. Принцип на определување (Fe како пример) | Комплексите на аминокиселини од железо имаат многу ниска растворливост во безводен етанол, а слободните метални јони се растворливи во безводен етанол, разликата во растворливоста помеѓу двата во безводен етанол беше искористена за да се одреди стапката на хелација на комплексите на аминокиселини од железо. |
| Во формулата: V1 - волумен на стандарден раствор на цериум сулфат потрошен за титрација на тест растворот, mL; | Безводен етанол; остатокот е ист како во клаузула 4.5.2 во GB/T 27983-2011. | 3. Чекори на анализа |
| Направете два обида паралелно. Измерете 0,1 g од примерокот сушен на 103 ± 2℃ во текот на 1 час, со точност до 0,0001 g, додадете 100 mL безводен етанол за да се раствори, филтрирајте, остатокот од филтерот измијте го со 100 mL безводен етанол најмалку три пати, потоа префрлете го остатокот во конусна колба од 250 mL, додадете 10 mL раствор на сулфурна киселина согласно клаузула 4.5.3 во GB/T27983-2011, а потоа извршете ги следните чекори согласно клаузула 4.5.3 „Загрејте за да се раствори, а потоа оставете да се излади“ во GB/T27983-2011. Извршете го слепиот тест во исто време. | 4. Одредување на вкупната содржина на железо | 4.1 Принципот на определување е ист како во клаузулата 4.4.1 во GB/T 21996-2008. |
4.2. Реагенси и раствори
| 4.2.1 Мешана киселина: Додадете 150 mL сулфурна киселина и 150 mL фосфорна киселина во 700 mL вода и добро измешајте. | 4.2.2 Индикаторски раствор на натриум дифениламин сулфонат: 5 g/L, подготвен според GB/T603. | 4.2.3 Стандарден раствор за титрација на цериум сулфат: концентрација c [Ce (SO4) 2] = 0,1 mol/L, подготвено според GB/T601. | |
| 4.3 Чекори на анализа | Направете два обида паралелно. Измерете 0,1 g од примерокот, со точност од 020001 g, ставете го во конусна колба од 250 mL, додадете 10 mL мешана киселина, по растворањето, додадете 30 ml вода и 4 капки индикаторски раствор од натриум дианилин сулфонат, а потоа извршете ги следните чекори според клаузула 4.4.2 во GB/T21996-2008. Извршете го слепиот тест во исто време. | 4.4 Претставување на резултатите | Вкупната содржина на железо X1 во комплексите на аминокиселини од железо во однос на масениот удел на железо, вредноста изразена во %, беше пресметана според формулата (1): |
| X1=(V-V0)×C×M×10-3×100 | V0 - стандарден раствор на цериум сулфат потрошен за титрација на слеп раствор, mL; | V0 - стандарден раствор на цериум сулфат потрошен за титрација на слеп раствор, mL; | C - Вистинска концентрација на стандарден раствор на цериум сулфат, mol/L5. Пресметка на содржината на железо во хелатитеСодржината на железо X2 во хелатот во однос на масениот удел на железо, вредноста изразена во %, беше пресметана според формулата: x2 = ((V1-V2) × C × 0,05585)/m1 × 100 |
| Во формулата: V1 - волумен на стандарден раствор на цериум сулфат потрошен за титрација на тест растворот, mL; | V2 - стандарден раствор на цериум сулфат потрошен за титрација на слеп раствор, mL;nom1-Маса на примерокот, g. Земете ја аритметичката средина од резултатите од паралелното одредување како резултати од одредувањето, а апсолутната разлика на резултатите од паралелното одредување не е поголема од 0,3%. | 0,05585 - маса на феро железо изразена во грамови еквивалентна на 1,00 mL стандарден раствор на цериум сулфат C[Ce(SO4)2.4H20] = 1,000 mol/L.nom1-Маса на примерокот, g. Земете ја аритметичката средина од резултатите од паралелното одредување како резултати од одредувањето, а апсолутната разлика на резултатите од паралелното одредување не е поголема од 0,3%. | 6. Пресметка на стапката на хелацијаСтапка на хелација X3, вредноста изразена во %, X3 = X2/X1 × 100Додаток C: Методи за одредување на стапката на хелација на Zinpro |
Усвојување на стандардот: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Реагенси и материјали
a) Глацијална оцетна киселина: аналитички чиста; b) Перхлорна киселина: 0,0500mol/L; c) Индикатор: 0,1% кристално виолетов индикатор (глацијална оцетна киселина)
2. Одредување на слободни аминокиселини
2.1 Примероците беа сушени на 80°C во текот на 1 час.
2.2 Ставете го примерокот во сув сад за да се олади природно на собна температура или да се олади до употреблива температура.
2.3 Измерете приближно 0,1 g од примерокот (со точност до 0,001 g) во сува конусна колба од 250 mL
2.4 Брзо продолжете со следниот чекор за да избегнете примерокот да апсорбира амбиентална влага.
2.5 Додадете 25 мл глацијална оцетна киселина и добро измешајте не повеќе од 5 минути.
2.6 Додадете 2 капки индикатор од кристална виолетова боја.
2.7 Титрирајте со 0,0500mol/L (±0,001) стандарден раствор за титрација на перхлорна киселина сè додека растворот не ја промени бојата од виолетова во зелена во тек на 15 секунди без да се промени бојата како крајна точка.
2.8 Запишете го волуменот на потрошениот стандарден раствор.
2.9 Извршете го слепиот тест во исто време.
- 3. Пресметка и резултати
- каталонски
- Physicochemical parameters
V1 - Волумен што се користи за титрација на примероци со стандарден раствор на перхлорна киселина, во милилитри (mL).
Vo - Волумен што се користи за титрациска слепа со стандарден раствор на перхлорна киселина, во милилитри (mL);
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Адреса: улица Кингпу бр. 147, град Шоуан, област Пуџијанг, град Ченгду, покраина Сечуан, Кина
Телефон: 86-18880477902
Производи
Неоргански минерали во трагови
- Органски минерали во трагови
- свахили
- Прилагодена услуга
- Брзи линкови
Профил на компанијата
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| гуџарати | Кликнете за барање | © Авторски права - 2010-2025: Сите права се задржани. | Мапа на сајтот НАЈДОБРО ПРЕБАРУВАЊЕ Телефон |
| Тел. | 86-18880477902 | јавански | Е-пошта |
| 8618880477902 | кинески | француски | |
| Bird | кинески | француски | германски шпански |
| Aquatic animals | јапонски | корејски | арапски грчки |
| турски | италијански | ||
| Ruminant animal g/head day | January 0.75 | индонезиски Африканс шведски |
полски
- баскиски
- каталонски
- Physicochemical parameters
хинди
Лао
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Шона
бугарски
- себуански
- This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
- The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
- хрватски
холандски
| Application object | урду виетнамски | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| гуџарати | хаитски | хауса | кињарванда Хмонг унгарски |
| Piglets and fattening pigs | игбо | јавански | Каннада кмерски курдски |
| киргистански | латински | ||
| Bird | 300～400 | 45～60 | македонски малајски малајаламски |
| Aquatic animals | 200～300 | 30～45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
норвешки
- паштунски
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
српски
сесото
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
Шона
Синди
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
свахили
таџички
тамилски
телугу
тајландски
| Application object | урду виетнамски | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| јидиш | јоруба | Зулу | кињарванда Орија Туркменистан |
| Ујгур | 250～400 | 37.5～60 | 1. Improving the immunity of piglets, reducing diarrhea and mortality; 2. Improving palatability, increasing feed intake, increasing growth rate and improving feed conversion; 3. Make the pig coat bright and improve the carcass quality and meat quality. |
| Bird | 300～400 | 45～60 | 1. Improve feather glossiness; 2. improve the laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, and strengthen the coloring ability of egg yolk; 3. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 4. Improve feed conversion and increase growth rate. |
| Aquatic animals | January 300 | 45 | 1. Promote growth, improve feed conversion; 2. Improve anti-stress abolity, reduce morbidity and mortality. |
| Ruminant animal g/head day | 2.4 | 1. Improve milk yield, prevent mastitis and foof rot, and reduce somatic cell content in milk; 2. Promote growth, improve feed conversion and improve meat quality. |
4. Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Product Name: Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
- Appearance: brownish-yellow granules
- Physicochemical parameters
a) Mn: ≥ 10.0%
b) Total amino acids: ≥ 19.5%
c) Chelation rate: ≥ 95%
d) Arsenic: ≤ 2 mg/kg
e) Lead: ≤ 5 mg/kg
f) Cadmium: ≤ 5 mg/kg
g) Moisture content: ≤ 5.0%
h) Fineness: All particles pass through 20 mesh, with a main particle size of 60-80 mesh
n=0, 1,2,...indicates chelated manganese for dipeptides, tripeptides, and tetrapeptides
Characteristics of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
This product is an all-organic trace mineral chelated by a special chelating proces with pure plant enzymatic small molecule peptides as chelating substrates and trace elements;
This product is chemically stable and can significantly reduce its damage to vitamins and fats, etc. The use of this product is conducive to improving feed quality;
The product is absorbed through small peptide and amino acid pathways, reducing the competition and antagonism with other trace elements, and has the best bio-absorption and utilization rate;
The product can improve the growth rate, improve feed conversion and health status significantly; and improve the laying rate, hatching rate and healthy chick rate of breeding poultry obviously;
Manganese is necessary for bone growth and connective tissue maintenance. It is closely related to many enzymes; and participates in carbohydrate, fat and protein metabolism, reproduction and immune response.
Usage and Efficacy of Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade
| Application object | Suggested dosage (g/t full-value material) | Content in full-value feed (mg/kg) | Efficacy |
| Breeding pig | 200～300 | 30～45 | 1. Promote the normal development of sexual organs and improve sperm motility; 2. Improve the reproductive capacity of breeding pigs and reduce reproductive obstacles. |
| Piglets and fattening pigs | 100～250 | 15～37.5 | 1. It is beneficial to improve immune functions, and improve anti-stress ability and disease resistance; 2. Promote growth and improve feed conversion significantly; 3. Improve meat color and quality, and improve lean meat percentage. |
| Bird | 250～350 | 37.5～52.5 | 1. Improve anti-stress ability and reduce mortality; 2. Improve laying rate, fertilization rate and hatching rate of breeding eggs, improve eggshell quality and reduce shell breaking rate; 3. Promote bone growth and reduce the incidence of leg diseases. |
| Aquatic animals | 100～200 | 15～30 | 1. Promote growth and improve its anti-stress ability and disease resistance; 2. Improve sperm motility and hatching rate of fertilized eggs. |
| Ruminant animal g/head day | Cattle 1.25 | 1. Prevent fatty acid synthesis disorder and bone tissue damage; 2. Improve reproductive capacity, prevent abortion and postpartum paralysis of female animals, reduce the mortality of calves and lambs, and increase the newborn weight of young animals. | |
| Goat 0.25 |
Part 6 FAB of Small Peptide-mineral Chelates
| S/N | F: Functional attributes | A: Competitive differences | B: Benefits brought by competitive differences to users |
| 1,52 | Selectivity control of raw materials | Select pure plant enzymatic hydrolysis of small peptides | High biological safety, avoiding cannibalism |
| 2 | Directional digestion technology for double protein biological enzyme | High proportion of small molecular peptides | More "targets", which are not easy to saturation, with high biological activity and better stability |
| 3 | Advanced pressure spray & drying technology | Granular product, with uniform particle size, better fluidity, not easy to absorb moisture | Ensure easy to use, more uniform mixing in complete feed |
| Low water content (≤ 5%), which greatly reduces the influence caused by vitamins and enzyme preparations | Improve the stability of feed products | ||
| 4 | Advanced production control technology | Totally enclosed process, high degree of automatic control | Safe and stable quality |
| 5 | Advanced quality control technology | Establish and improve scientific and advanced analytical methods and control means for detecting factors affecting product quality, such as acid-soluble protein, molecular weight distribution, amino acids and chelating rate | Ensure quality, ensure efficiency and improve efficiency |
Part 7 Competitor Comparison
Standard VS Standard
Comparison of peptide distribution and chelation rate of products
| Sustar's products | Proportion of small peptides（180-500） | Zinpro's products | Proportion of small peptides（180-500） |
| AA-Cu | ≥74% | AVAILA-Cu | 78% |
| AA-Fe | ≥48% | AVAILA-Fe | 59% |
| AA-Mn | ≥33% | AVAILA-Mn | 53% |
| AA-Zn | ≥37% | AVAILA-Zn | 56% |
| Sustar's products | Chelation rate | Zinpro's products | Chelation rate |
| AA-Cu | 94.8% | AVAILA-Cu | 94.8% |
| AA-Fe | 95.3% | AVAILA-Fe | 93.5% |
| AA-Mn | 94.6% | AVAILA-Mn | 94.6% |
| AA-Zn | 97.7% | AVAILA-Zn | 90.6% |
The ratio of small peptides of Sustar is slightly lower than that of Zinpro, and the chelation rate of Sustar's products is slightly higher than that of Zinpro's products.
Comparison of the content of 17 amino acids in different products
| Name of amino acids | Sustar's Copper Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA copper | Sustar's Ferrous Amino Acid C helate Feed Grade | Zinpro's AVAILA iron | Sustar's Manganese Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA manganese | Sustar's Zinc Amino Acid Chelate Feed Grade | Zinpro's AVAILA zinc |
| aspartic acid (%) | 1.88 | 0.72 | 1.50 | 0.56 | 1.78 | 1.47 | 1.80 | 2.09 |
| glutamic acid (%) | 4.08 | 6.03 | 4.23 | 5.52 | 4.22 | 5.01 | 4.35 | 3.19 |
| Serine (%) | 0.86 | 0.41 | 1.08 | 0.19 | 1.05 | 0.91 | 1.03 | 2.81 |
| Histidine (%) | 0.56 | 0.00 | 0.68 | 0.13 | 0.64 | 0.42 | 0.61 | 0.00 |
| Glycine (%) | 1.96 | 4.07 | 1.34 | 2.49 | 1.21 | 0.55 | 1.32 | 2.69 |
| Threonine (%) | 0.81 | 0.00 | 1.16 | 0.00 | 0.88 | 0.59 | 1.24 | 1.11 |
| Arginine (%) | 1.05 | 0.78 | 1.05 | 0.29 | 1.43 | 0.54 | 1.20 | 1.89 |
| Alanine (%) | 2.85 | 1.52 | 2.33 | 0.93 | 2.40 | 1.74 | 2.42 | 1.68 |
| Tyrosinase (%) | 0.45 | 0.29 | 0.47 | 0.28 | 0.58 | 0.65 | 0.60 | 0.66 |
| Cystinol (%) | 0.00 | 0.00 | 0.09 | 0.00 | 0.11 | 0.00 | 0.09 | 0.00 |
| Valine (%) | 1.45 | 1.14 | 1.31 | 0.42 | 1.20 | 1.03 | 1.32 | 2.62 |
| Methionine (%) | 0.35 | 0.27 | 0.72 | 0.65 | 0.67 | 0.43 | January 0.75 | 0.44 |
| Phenylalanine (%) | 0.79 | 0.41 | 0.82 | 0.56 | 0.70 | 1.22 | 0.86 | 1.37 |
| Isoleucine (%) | 0.87 | 0.55 | 0.83 | 0.33 | 0.86 | 0.83 | 0.87 | 1.32 |
| Leucine (%) | 2.16 | 0.90 | 2.00 | 1.43 | 1.84 | 3.29 | 2.19 | 2.20 |
| Lysine (%) | 0.67 | 2.67 | 0.62 | 1.65 | 0.81 | 0.29 | 0.79 | 0.62 |
| Proline (%) | 2.43 | 1.65 | 1.98 | 0.73 | 1.88 | 1.81 | 2.43 | 2.78 |
| Total amino acids (%) | 23.2 | 21.4 | 22.2 | 16.1 | 22.3 | 20.8 | 23.9 | 27.5 |
Overall, the proportion of amino acids in Sustar's products is higher than that in Zinpro's products.
Part 8 Effects of use
Effects of different sources of trace minerals on the production performance and egg quality of laying hens in the late laying period
Production Process
- Targeted chelation technology
- Shear emulsification technology
- Pressure spray & drying technology
- Refrigeration & dehumidification technology
- Advanced environmental control technology
Appendix A: Methods for the Determination of relative molecular mass distribution of peptides
Adoption of standard: GB/T 22492-2008
1 Test Principle:
It was determined by high performance gel filtration chromatography. That is to say, using porous filler as stationary phase, based on the difference in the relative molecular mass size of the sample components for separation, detected at the peptide bond of the ultraviolet absorption wavelength of 220nm, using the dedicated data processing software for the determination of relative molecular mass distribution by gel filtration chromatography (i.e., the GPC software), the chromatograms and their data were processed, calculated to get the size of the relative molecular mass of the soybean peptide and the distribution range.
2. Reagents
The experimental water should meet the specification of secondary water in GB/T6682, the use of reagents, except for special provisions, are analytically pure.
2.1 Reagents include acetonitrile (chromatographically pure), trifluoroacetic acid (chromatographically pure),
2.2 Standard substances used in the calibration curve of relative molecular mass distribution: insulin, mycopeptides, glycine-glycine-tyrosine-arginine, glycine-glycine-glycine
3 Instrument and equipment
3.1 High Performance Liquid Chromatograph (HPLC): a chromatographic workstation or integrator with a UV detector and GPC data processing software.
3.2 Mobile phase vacuum filtration and degassing unit.
3.3 Electronic balance: graduated value 0.000 1g.
4 Operating steps
4.1 Chromatographic conditions and system adaptation experiments (reference conditions)
4.1.1 Chromatographic column: TSKgelG2000swxl300 mm×7.8 mm (inner diameter) or other gel columns of the same type with similar performance suitable for the determination of proteins and peptides.
4.1.2 Mobile phase: Acetonitrile + water + trifluoroacetic acid = 20 + 80 + 0.1.
4.1.3 Detection wavelength: 220 nm.
4.1.4 Flow rate: 0.5 mL/min.
4.1.5 Detection time: 30 min.
4.1.6 Sample injection volume: 20μL.
4.1.7 Column temperature: room temperature.
4.1.8 In order to make the chromatographic system meet the detection requirements, it was stipulated that under the above chromatographic conditions, the gel chromatographic column efficiency, i.e., the theoretical number of plates (N), was not less than 10000 calculated on the basis of the peaks of the tripeptide standard (Glycine-Glycine-Glycine).
4.2 Production of relative molecular mass standard curves
The above different relative molecular mass peptide standard solutions with a mass concentration of 1 mg / mL were prepared by mobile phase matching, mixed in a certain proportion, and then filtered through an organic phase membrane with the pore size of 0.2 μm~0.5 μm and injected into the sample, and then the chromatograms of the standards were obtained. Relative molecular mass calibration curves and their equations were obtained by plotting the logarithm of relative molecular mass against retention time or by linear regression.
4.3 Sample treatment
Accurately weigh 10mg of sample in a 10mL volumetric flask, add a little mobile phase, ultrasonic shaking for 10min, so that the sample is fully dissolved and mixed, diluted with mobile phase to the scale, and then filtered through an organic phase membrane with a pore size of 0.2μm~0.5μm, and the filtrate was analyzed according to the chromatographic conditions in A.4.1.
5. Calculation of relative molecular mass distribution
After analyzing the sample solution prepared in 4.3 under the chromatographic conditions of 4.1, the relative molecular mass of the sample and its distribution range can be obtained by substituting the chromatographic data of the sample into the calibration curve 4.2 with GPC data processing software. The distribution of the relative molecular masses of the different peptides can be calculated by the peak area normalization method, according to the formula: X=A/A total×100
In the formula: X - The mass fraction of a relative molecular mass peptide in the total peptide in the sample, %;
A - Peak area of a relative molecular mass peptide;
Total A - the sum of the peak areas of each relative molecular mass peptide, calculated to one decimal place.
6 Repeatability
The absolute difference between two independent determinations obtained under conditions of repeatability shall not exceed 15% of the arithmetic mean of the two determinations.
Appendix B: Methods for the Determination of Free Amino Acids
Adoption of standard: Q/320205 KAVN05-2016
1.2 Reagents and materials
Glacial acetic acid: analytically pure
Perchloric acid: 0.0500 mol/L
Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
The samples were dried at 80°C for 1 hour.
Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask.
Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture
Add 25 mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5 min.
Add 2 drops of crystal violet indicator
Titrate with 0.0500 mol / L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to the end point.
Record the volume of standard solution consumed.
Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%) and is calculated according to the formula: X = C × (V1-V0) × 0.1445/M × 100%, in tne formula:
C - Concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445: Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
Appendix C: Methods for the Determination of Sustar's chelation rate
Adoption of standards: Q/70920556 71-2024
1. Determination principle (Fe as an example)
Amino acid iron complexes have very low solubility in anhydrous ethanol and free metal ions are soluble in anhydrous ethanol, the difference in solubility between the two in anhydrous ethanol was utilized to determine the chelation rate of amino acid iron complexes.
2. Reagents & Solutions
Anhydrous ethanol; the rest is the same as clause 4.5.2 in GB/T 27983-2011.
3. Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of the sample dried at 103±2℃ for 1 hour, accurate to 0.0001g, add 100mL of anhydrous ethanol to dissolve, filter, filter residue washed with 100mL of anhydrous ethanol for at least three times, then transfer the residue into a 250mL conical flask, add 10mL of sulfuric acid solution according to clause 4.5.3 in GB/T27983-2011, and then perform the following steps according to clause 4.5.3 “Heat to dissolve and then let cool” in GB/T27983-2011. Carry out the blank test at the same time.
4. Determination of total iron content
4.1 The principle of determination is the same as clause 4.4.1 in GB/T 21996-2008.
4.2. Reagents & Solutions
4.2.1 Mixed acid: Add 150mL of sulfuric acid and 150mL of phosphoric acid to 700mL of water and mix well.
4.2.2 Sodium diphenylamine sulfonate indicator solution: 5g/L, prepared according to GB/T603.
4.2.3 Cerium sulfate standard titration solution: concentration c [Ce (SO4) 2] = 0.1 mol/L, prepared according to GB/T601.
4.3 Steps of analysis
Do two trials in parallel. Weigh 0.1g of sample, accurate to 020001g, place in a 250mL conical flask, add 10mL of mixed acid, after dissolution, add 30ml of water and 4 drops of sodium dianiline sulfonate indicator solution, and then perform the following steps according to clause 4.4.2 in GB/T21996-2008. Carry out the blank test at the same time.
4.4 Representation of results
The total iron content X1 of the amino acid iron complexes in terms of mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to formula (1):
X1=(V-V0)×C×M×10-3×100
In the formula: V - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V0 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L
5. Calculation of iron content in chelates
The iron content X2 in the chelate in terms of the mass fraction of iron, the value expressed in %, was calculated according to the formula: x2 = ((V1-V2) × C × 0.05585)/m1 × 100
In the formula: V1 - volume of cerium sulfate standard solution consumed for titration of test solution, mL;
V2 - cerium sulfate standard solution consumed for titration of blank solution, mL;
C - Actual concentration of cerium sulfate standard solution, mol/L;
0.05585 - mass of ferrous iron expressed in grams equivalent to 1.00 mL of cerium sulfate standard solution C[Ce(SO4)2.4H20] = 1.000 mol/L.
m1-Mass of the sample, g. Take the arithmetic mean of the parallel determination results as the determination results, and the absolute difference of the parallel determination results is not more than 0.3%.
6. Calculation of chelation rate
Chelation rate X3, the value expressed in %, X3 = X2/X1 × 100
Appendix C: Methods for the Determination of Zinpro's chelation rate
Adoption of standard: Q/320205 KAVNO7-2016
1. Reagents and materials
a) Glacial acetic acid: analytically pure; b) Perchloric acid: 0.0500mol/L; c) Indicator: 0.1% crystal violet indicator (glacial acetic acid)
2. Determination of free amino acids
2.1 The samples were dried at 80°C for 1 hour.
2.2 Place the sample in a dry container to cool naturally to room temperature or cool down to a usable temperature.
2.3 Weigh approximately 0.1 g of sample (accurate to 0.001 g) into a 250 mL dry conical flask
2.4 Quickly proceed to the next step to avoid the sample from absorbing ambient moisture.
2.5 Add 25mL of glacial acetic acid and mix well for no more than 5min.
2.6 Add 2 drops of crystal violet indicator.
2.7 Titrate with 0.0500mol/L (±0.001) standard titration solution of perchloric acid until the solution changes from purple to green for 15s without changing color as the end point.
2.8 Record the volume of standard solution consumed.
2.9 Carry out the blank test at the same time.
3. Calculation and results
The free amino acid content X in the reagent is expressed as a mass fraction (%), calculated according to formula (1): X=C×(V1-V0) ×0.1445/M×100%...... .......(1)
In the formula: C - concentration of standard perchloric acid solution in moles per liter (mol/L)
V1 - Volume used for titration of samples with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL).
Vo - Volume used for titration blank with standard perchloric acid solution, in milliliters (mL);
M - Mass of the sample, in grams (g ).
0.1445 - Average mass of amino acids equivalent to 1.00 mL of standard perchloric acid solution [c (HClO4) = 1.000 mol / L].
4. Calculation of chelation rate
The chelation rate of the sample is expressed as mass fraction (%), calculated according to formula (2): chelation rate = (total amino acid content - free amino acid content)/total amino acid content×100%.
Post time: Sep-17-2025
